SUMOylation促進(jìn)細(xì)胞外囊泡介導(dǎo)的lncRNA ELNAT1的傳遞和膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移

欄目:最新研究動(dòng)態(tài) 發(fā)布時(shí)間:2021-08-03
本研究發(fā)現(xiàn),SUMOylation促進(jìn)細(xì)胞外囊泡介導(dǎo)的lncRNA ELNAT1的傳遞和膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移......


   小泛素修飾
(SUMO)結(jié)合稱為SUMO修飾,其作為生物活性分類的誘導(dǎo)劑分子進(jìn)入細(xì)胞外囊泡(EVs),觸發(fā)淋巴管生成,進(jìn)一步驅(qū)動(dòng)腫瘤淋巴結(jié)(LN)轉(zhuǎn)移,但確切的機(jī)制仍不清楚。本研究發(fā)現(xiàn),SUMOylation促進(jìn)細(xì)胞外囊泡介導(dǎo)的lncRNA ELNAT1的傳遞和膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。該文于20214月發(fā)表在《The Journal of Clinical InvestigationIF: 14.808。


技術(shù)路線:



結(jié)果:
 1. SUMOylation參與膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移

為了探討SUMOylation在膀胱癌(BCa)的淋巴結(jié)(LN)轉(zhuǎn)移中的作用,作者基于淋巴癌與TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)中比較SUMOylation的表達(dá)譜,發(fā)現(xiàn)BCasUBC9的高表達(dá),同時(shí)生成分析顯示,與UBC9表達(dá)較低的患者相比,UBC9表達(dá)較高的患者總生存率OS)和無(wú)病生存期(DFS)較低(Figure 1 A-E。為了證明UBC9LN轉(zhuǎn)移中的作用,作者通過(guò)242例的BCas患者樣本,發(fā)現(xiàn)UBC9LN轉(zhuǎn)移過(guò)程中高表達(dá)(Figure 1 F)。接下來(lái)為了證明,SUMOylation對(duì)BCas誘導(dǎo)的淋巴內(nèi)皮管的形成和遷移作用,通過(guò)其特異性抑制劑阻斷SUMOylation 2D-08)明顯抑制了該誘導(dǎo)過(guò)程(Figure 1 G-I)。以上數(shù)據(jù)表明,UBC9異常高表達(dá)與膀胱癌進(jìn)展和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移正相關(guān),SUMOylation參與膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。


                                                                                                Figure 1 SUMOylation參與膀胱癌的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移 

2. EVs介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)

EVs介導(dǎo)的lncRNA轉(zhuǎn)運(yùn)是腫瘤細(xì)胞與TME之間通過(guò)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)發(fā)生的一個(gè)關(guān)鍵過(guò)程。作者采集各5例的健康志愿者與BCas患者的尿液,通過(guò)NGS測(cè)序確定了EVslncRNA的整體表達(dá)譜,結(jié)合與SUMOylation途徑的相關(guān)性,最終篩選出EVs中異常高表達(dá)的lncRNA ELNAT1Figure 2 A, B)。結(jié)合BCaLN轉(zhuǎn)移,ELNAT1BCaLN轉(zhuǎn)移中高表達(dá)(Figure 2 C, D),并且ELNAT1過(guò)表達(dá)與BCa患者預(yù)后不良相關(guān)(Figure 2 E, F)。另外,在瘤內(nèi)和瘤旁區(qū)域ELNAT1的表達(dá)與淋巴管密度正相關(guān)(Figure 2 G, H),提示ELNAT1廣泛參與BCa的淋巴管生成。

為了證明ELNAT1BCa分泌的EV的關(guān)系,作者從BCa細(xì)胞培養(yǎng)基中分離出EVs,采用透射電子顯微鏡(TEM)、納米粒子跟蹤分析(NTA)及對(duì)EVs的蛋白標(biāo)志物檢測(cè),證明了作者準(zhǔn)確分離出BCa分泌的EVFigure 2 J-L)。并且從BCa患者和健康志愿者尿液樣本中分離的EVs中檢測(cè)ELNAT1的表達(dá),發(fā)現(xiàn)ELNAT1BCa分泌的EV中過(guò)表達(dá)(Figure 2 I)。以上數(shù)據(jù)表明,EVs介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)。


                                                                                              Figure 2 EVs介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)

3.
EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)BCa體內(nèi)外淋巴管生成和淋巴轉(zhuǎn)移

為了確定EV介導(dǎo)的ELNAT1是否促進(jìn)體外淋巴管生成,作者用HLECs孵育BCa細(xì)胞分泌的EVs的檢測(cè)管形成和遷移。研究發(fā)現(xiàn),干擾ELNAT1基因會(huì)破壞UM-UC-3T24細(xì)胞分泌EVs誘導(dǎo)HLECs管形成和遷移的能力(Figure 3 A-C),這些結(jié)果表明EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)了體外淋巴管生成。

為了確定EVs介導(dǎo)的ELNAT1在體內(nèi)促進(jìn)LN轉(zhuǎn)移,首先構(gòu)建一個(gè)小鼠腘窩的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移模型。小鼠隨機(jī)分為2組(n = 12),每3天接受由載體(UM-UC-EV Vector)或ELNAT1UM-UC-3-EV ELNAT1)轉(zhuǎn)染的UM-UC-3細(xì)胞分泌的EVs 瘤內(nèi)注射,當(dāng)原發(fā)腫瘤大小達(dá)到200mm3時(shí)采集腫瘤和腘窩的LNsFigure 3D)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),通過(guò)體內(nèi)成像系統(tǒng)(IVIS)發(fā)現(xiàn),與UM-UC-EV Vector相比,UM-UC-3-EV ELNAT1促進(jìn)了UM-UC-3細(xì)胞向腘窩LNs的轉(zhuǎn)移,LNs體積更大Figure 3 E-       I。

由于淋巴管生成是淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵步驟,因此進(jìn)一步評(píng)估了EVs介導(dǎo)的ELNAT1在體內(nèi)對(duì)淋巴管生成的影響。結(jié)果顯示,UM-UC-3-EV ELNAT1組顯著增加了小鼠足底腫瘤瘤內(nèi)和瘤旁區(qū)域的淋巴管內(nèi)皮透明質(zhì)酸受體1陽(yáng)性(LYVE-1 positive)(Figure 3 J, K)。以上結(jié)果表明,EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)BCa體內(nèi)淋巴管生成和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。


Figure 3 EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)BCa體內(nèi)外淋巴管生成和淋巴轉(zhuǎn)移


4. ELNAT1
直接與hnRNPA1相互作用

由于lncRNA的分子功能與其亞細(xì)胞定位相關(guān),通過(guò)FISH和亞細(xì)胞定位實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)ELNAT1UM-UC-3 T24 細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核均有表達(dá)(Supplemental Figure7 A, B)。并且通過(guò)RNA-pull down實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)在分子量35~40 kDa上有明顯的條帶(Figure 4 A)。對(duì)此,通過(guò)質(zhì)譜(MS)和Western blot分析顯示,hnRNPA1是最豐富的ELNAT1相互作用蛋白(Figure 4 B-D)。熒光染色和RNA免疫沉淀(RIP)證實(shí)了ELNAT1hnRNPA1UM-UC-3T24細(xì)胞中的共定位,并且ELNAT1通過(guò)內(nèi)源性hnRNPA1富集(Figure 4 E, F),進(jìn)一步驗(yàn)證了ELNAT1hnRNPA1之間的相互作用。

此外,為進(jìn)一步驗(yàn)證ELNAT1hnRNPA1相互作用區(qū)域,使用ELNAT1不同序列缺失進(jìn)行RNA-pull down分析,以評(píng)估ELNAT1hnRNPA1結(jié)合所需的區(qū)域。結(jié)果發(fā)現(xiàn),ELNAT1序列中600-750 nt位置是其與hnRNPA1交互作用區(qū)域(Figure 4 G, H)。并通過(guò)POSTAR2預(yù)測(cè)ELNAT1610-680 nt區(qū)域的莖環(huán)結(jié)構(gòu)可能被hnRNPA1識(shí)別(Figure 4 I),而當(dāng)這一區(qū)域缺失時(shí),hnRNPA1減弱對(duì)ELNAT1的富集(Figure 4 J)。因此,這表明這些特定的序列(610-680 nt)對(duì)ELNAT1 hnRNPA1的相互作用至關(guān)重要。


Figure 4 ELNAT1直接與hnRNPA1相互作用


5. ELNAT1UBC9啟動(dòng)子形成DNA-RNA三聯(lián)體,通過(guò)招募hnRNPA1增強(qiáng)H3K4me3修飾

為了探索ELNAT1誘導(dǎo)BCa淋巴轉(zhuǎn)移的分子機(jī)制,我們使用NGS檢測(cè)過(guò)表達(dá)ELNAT1BCa細(xì)胞和對(duì)照細(xì)胞(Figure 5 A),由于SUMOylation已經(jīng)被證明可以調(diào)節(jié)特異性RNA的識(shí)別,并參與RNA分選進(jìn)入EVs的過(guò)程,因此鑒定ELNAT1SUMOylation相關(guān)靶基因。在受ELNAT1調(diào)控的925個(gè)基因中,作者發(fā)現(xiàn)UBC9SUMOylation相關(guān)基因變化最顯著的(Figure 5 B-D)。接著通過(guò)RNA純化(ChIRP)檢驗(yàn)ELNAT1UBC9P1153 ~ 143 bp)啟動(dòng)子區(qū)域存在生理相互作用(Figure 5 E, F)。CD光譜證實(shí)ELNAT1/UBC9 TTS1組在270 ~ 280 nm處有一個(gè)顯著的正峰,在210 nm處有一個(gè)負(fù)峰。在FENDRR/PITX2陽(yáng)性對(duì)照組中也有類似的發(fā)現(xiàn)(Figure 5 G, H)。FRET技術(shù)分析顯示, ELNAT1 / UBC9 TTS1組相比,熒光強(qiáng)度發(fā)生了巨大的變化:從520 nm570–580 nm,熒光強(qiáng)度控制單鏈RNA / UBC9 ssRNA / UBC9 TTS1集團(tuán),這與FENDRR / PITX2陽(yáng)性對(duì)照組類似(Figure 5 I, J)。

此外,ChIP分析顯示,過(guò)表達(dá)ELNAT1增加了hnRNPA1和組蛋白甲基化(H3K4me3)在UBC9啟動(dòng)子上的富集,而通過(guò)刪除hnRNPA1ELNAT1結(jié)合位點(diǎn)則抑制了富集(Figure 5 K, L)。同時(shí),ELNAT1沉默顯著降低了UM-UC-3T24細(xì)胞UBC9啟動(dòng)子的hnRNPA1占用率和H3K4me3甲基化(Figure 5 M, N),這證明了hnRNPA1通過(guò)調(diào)節(jié)UBC9啟動(dòng)子上的組蛋白甲基化,促進(jìn)ELNAT1誘導(dǎo)UBC9的轉(zhuǎn)錄激活。以上結(jié)果說(shuō)明,ELNAT1UBC9啟動(dòng)子形成DNA-RNA三聯(lián)體,通過(guò)招募hnRNPA1增強(qiáng)H3K4me3修飾。


Figure 5 ELNAT1UBC9啟動(dòng)子形成DNA-RNA三聯(lián)體,通過(guò)招募hnRNPA1增強(qiáng)H3K4me3修飾


6. ELNAT1通過(guò)UBC9誘導(dǎo)的hnRNPA1SUMOylation被封裝到EVs

UBC9可以催化靶蛋白的SUMOylation來(lái)調(diào)節(jié)它們與生物分子的相互作用和細(xì)胞運(yùn)輸。Figure 6 A顯示,通過(guò)co-IP分析,觀察到一個(gè)明顯的15~25 kDa條帶被hnRNPA1特異性富集。此外,IP分析顯示UBC9過(guò)表達(dá)增強(qiáng)了hnRNPA1SUMO2連接,表明UBC9誘導(dǎo)hnRNPA1SUMOylationFigure 6 B)。將hnRNPA1SUMOylation修飾的位點(diǎn)賴氨酸3 K3)和賴氨酸113 K113)用精氨酸替代(Figure 6 C),并通過(guò)co-IP分析表明,證明了hnRNPA1SUMOylation修飾的位點(diǎn)是K113Figure 6 D)。ELNAT1過(guò)表達(dá)上調(diào)了hnRNPA1K113SUMO化,而敲除UBC9則消除了這個(gè)影響(Figure 6 E)。

另外,之前報(bào)道過(guò)hnRNPA1miR-196amiR-320加載到EVs中,本研究ELNAT1表現(xiàn)出的EVs-細(xì)胞比率與miR-196amiR-320相當(dāng)(Figure 6 F)。hnRNPA1沉默顯著抑制了ELNAT1BCa細(xì)胞分泌的EVs中的富集(Figure 6 G)。此外,缺失的ELNAT1(包含hnRNPA1結(jié)合位點(diǎn)的610-680 nt)主要保留在BCa細(xì)胞中(Figure 6 H),證實(shí)了ELNAT1通過(guò)與hnRNPA1的相互作用被加載到EVs中。

驗(yàn)證SUMOylation是否有助于hnRNPA1介導(dǎo)的EVs包裹ELNAT1。在BCa細(xì)胞中,hnRNPA1K113位點(diǎn)突變使BCa細(xì)胞分泌的EVsELNAT1表達(dá)降低,沉默UBC9降低了BCa細(xì)胞分泌的EVsELNAT1的富集(Figure 6 I, J)。與hnRNPA1 WT沉默相比,hnRNPA1沉默后,轉(zhuǎn)染hnRNPA1K113R并不能恢復(fù)EVs介導(dǎo)的ELNAT1下調(diào)(Figure 6 K)。共聚焦顯微鏡顯示,在UBC9沉默或hnRNPA1K113R突變后,ELNAT1CD36標(biāo)志的多囊泡(MVBs)中的積累明顯下降(Figure 6 L),表明ELNAT1進(jìn)入EVshnRNPA1SUMO化調(diào)控。


Figure 6 ELNAT1通過(guò)UBC9誘導(dǎo)的hnRNPA1SUMOylation被封裝到EVs


7. EVs
介導(dǎo)的ELNAT1HLECs內(nèi)化以誘導(dǎo)淋巴管生成

共聚焦顯微鏡顯示HLECsPKH67標(biāo)記EVs孵育后的點(diǎn)狀熒光強(qiáng)度(Figure 7 A),表明HLECs內(nèi)化了BCa分泌的EVs。此外,孵化UM-UC-3-EVELNAT1顯著上調(diào)HLECsELNAT1表達(dá),而孵化T24-EVsi-ELNAT1,則T24細(xì)胞分泌的EVsELNAT1表達(dá)下調(diào),則削弱了HLECsEVs誘導(dǎo)ELNAT1過(guò)表達(dá)的能力(Figure 7 B, C)。

為了排除淋巴血管生成是由內(nèi)源性ELNAT1激活HLECs中誘導(dǎo)的可能性,構(gòu)建了ELNAT1-KO HLECS ELNAT1HLECsELNAT1-KO)模型(Figure 7 D, E)。與HLECsELNAT1-WT一致,我們觀察到,EVs介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)增強(qiáng)了HLECsELNAT1-KO的管狀形成和遷移能力,而下調(diào)ELNAT1則抑制了BCa細(xì)胞分泌EVs誘導(dǎo)HLECsELNAT1-KO管狀形成和遷移的能力(Figure 7 F-H)。這表明BCa細(xì)胞分泌的EVs通過(guò)運(yùn)輸EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)淋巴管生成,而不是轉(zhuǎn)錄激活內(nèi)源性的ELNAT1。綜上所述,這些結(jié)果表明EVs介導(dǎo)的ELNAT1HLECs內(nèi)化誘導(dǎo)BCa淋巴管生成。


Figure 7 EVs介導(dǎo)的ELNAT1HLECs內(nèi)化以誘導(dǎo)淋巴管生成


8. EVs
介導(dǎo)的ELNAT1上調(diào)HLECsSOX18的表達(dá)

qRT-PCR分析UM-UC-3-EV1載體或UM-UC-3-EVELNAT1處理的HLECs中淋巴管生成相關(guān)基因的表達(dá),結(jié)果顯示SRY-box轉(zhuǎn)錄因子18 SOX18)是最明顯的與EVs介導(dǎo)的ELNAT1表達(dá)正相關(guān)的基因(Figure 8 A, B)。此外,ChIRP分析表明EVs介導(dǎo)的ELNAT1HLECsSOX18啟動(dòng)子的771~786 bpp4)直接相互作用(Figure 8 C, D)。SOX18-p4區(qū)域的突變降低了EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)的熒光素酶活性(Figure 8 E, F),表明SOX18-p4對(duì)于EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)HLECsSOX18的上調(diào)至關(guān)重要。hnRNPA1H3K4me3SOX18啟動(dòng)子上的富集與EVs介導(dǎo)的ELNAT1表達(dá)顯著相關(guān)(Figure 8 G, J)。EVs介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)增強(qiáng)了HLECs的管形成和遷移能力,而干擾SOX18HLECs的管形成和遷移能力受損(Figure 8 K, M),表明SOX18EVs介導(dǎo)的ELNAT1驅(qū)動(dòng)體外BCa淋巴管生成所必需的。綜上所述,這些結(jié)果表明,EVs介導(dǎo)的ELNAT1通過(guò)轉(zhuǎn)錄上調(diào)HLECsSOX18的表達(dá)來(lái)促進(jìn)BCa淋巴管生成。

Figure 8 EVs介導(dǎo)的ELNAT1上調(diào)HLECsSOX18的表達(dá)


9.
阻斷SUMOylation抑制EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移

si-NCsi-UBC9#1轉(zhuǎn)染的對(duì)照或ELNAT1過(guò)表達(dá)UM-UC-3細(xì)胞分泌的EVs處理HLECs,結(jié)果顯示過(guò)表達(dá)ELNAT1顯著促進(jìn)了體外BCa細(xì)胞分泌的EVs誘導(dǎo)淋巴血管生成,而沉默UBC9逆轉(zhuǎn)了這一作用(Figure 9 A-C)。IVIS證明UM-UC-3-EVELNAT1增強(qiáng)了體內(nèi)腘窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,而沉默UBC9抑制了這種作用(Figure 9 D, E)。UM-UC-3-EVELNAT1+ siUBC9 #1組的腘窩LNs體積比UM-UC-3-EVELNAT1組?。?/span>Figure 9 F)。與UM-UC-3-EVVector組相比,UM-UC-3-EVELNAT1增加了小鼠足底腫瘤的淋巴管數(shù)量,而下調(diào)UBC9的表達(dá)導(dǎo)致EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)的淋巴管數(shù)量逐漸減少(Figure 9 G, H)。此外, UM-UC-3-EVELNAT1+si-UBC9#1組的LN生成時(shí)間長(zhǎng)于UM-UC-3-EVELNAT1組(Figure 9 I)。綜上所述,這些結(jié)果表明UBC9誘導(dǎo)的SUMOylation抑制EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)的BCa淋巴管生成和LN轉(zhuǎn)移。


Figure 9阻斷SUMOylation抑制EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移


10. EVs
介導(dǎo)的ELNAT1BCa淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)

確定EVs介導(dǎo)的ELNAT1BCa淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移中的臨床意義十分重要。首先,作者發(fā)現(xiàn)來(lái)自BCa患者的尿中EVs與配對(duì)BCa組織的ELNAT1表達(dá)呈正相關(guān),這意味著EVs介導(dǎo)的ELNAT1BCaELNAT1調(diào)控的重要參與者(Figure 10 A)。同時(shí),BCa患者的尿中EV介導(dǎo)的ELNAT1過(guò)表達(dá)與BCa的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移呈正相關(guān)(Figure 10 B)。EV介導(dǎo)的ELNAT1表達(dá)較高的BCa患者總生存期(OS)和無(wú)病生存期(DFS)率較短(Figure 10 C-D)。ROC分析顯示尿液中EV介導(dǎo)的ELNAT1可有效區(qū)分BCa患者與健康志愿者 Figure 10 E)。與尿液細(xì)胞學(xué)和FISH檢查結(jié)果相比,尿液中EVs介導(dǎo)的ELNAT1診斷BCa-LN轉(zhuǎn)移的準(zhǔn)確性很高(Figure 10 F)。BCa患者血清中EVs介導(dǎo)的ELNAT1表達(dá)水平高于健康對(duì)照組(Figure 10 G)。與無(wú)淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的BCa患者血清相比,伴有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的BCa患者血清中EVs介導(dǎo)的ELNAT1表達(dá)上調(diào)(Figure 10 H)。


Figure 10 EVs介導(dǎo)的ELNAT1BCa淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)


結(jié)論:
EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)了BCa的淋巴管生成和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。充分闡明EVs介導(dǎo)的ELNAT1激活hnRNPA1/UBC9/ SOX18軸誘導(dǎo)BCa淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的精確機(jī)制,不僅將增加我們對(duì)EVs介導(dǎo)的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的認(rèn)識(shí),也將有助于開(kāi)發(fā)一種治療BCa的有效策略。