結(jié)直腸癌(CRC)是最常見(jiàn)的消化道惡性腫瘤之一,其發(fā)病率和死亡率分別居所有惡性腫瘤的第3位和第2位。腫瘤轉(zhuǎn)移是結(jié)直腸癌患者死亡的主要原因。臨床上約有45-60%的CRC患者存在肝轉(zhuǎn)移,超過(guò)90%的肝轉(zhuǎn)移灶在初診時(shí)無(wú)法切除。未行手術(shù)治療的結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移患者的中位生存時(shí)間僅為6.9個(gè)月,5年生存率低于5%。因此,破譯結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移的機(jī)制,發(fā)現(xiàn)新的治療靶點(diǎn),預(yù)防和干預(yù)轉(zhuǎn)移,提高患者生存率具有重要的臨床意義。環(huán)狀RNA(circRNA)是一類(lèi)特殊的內(nèi)源性RNA分子,具有共價(jià)閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu),由剪接體催化的反向剪接事件產(chǎn)生,一個(gè)基因位點(diǎn)可以產(chǎn)生一個(gè)或多個(gè)circRNA。高通量測(cè)序和計(jì)算機(jī)模擬方法已經(jīng)確定circRNA高度保守,并以疾病、組織或細(xì)胞特異性模式廣泛表達(dá)。circRNA越來(lái)越多地參與各種人類(lèi)疾病的發(fā)生和發(fā)展,一些circRNA被確定為預(yù)測(cè)疾病進(jìn)展和預(yù)后的生物標(biāo)志物。有趣的是,最近的一些證據(jù)表明,circRNA可以被翻譯成功能性肽。例如,circRNA編碼的截短蛋白如E-Cad-254aa和ARHGAP35-1289aa已被報(bào)道分別在膠質(zhì)瘤和肝細(xì)胞癌中發(fā)揮關(guān)鍵作用。由于circRNA的頭尾形狀,其編碼蛋白質(zhì)的方式不依賴(lài)帽,由內(nèi)部核糖體進(jìn)入位點(diǎn)(IRES)或N6-甲基腺苷(m6A)修飾驅(qū)動(dòng)。m6A是真核生物RNA中最豐富的內(nèi)部修飾,它是動(dòng)態(tài)可逆的。到目前為止,只有少數(shù)隱藏在circRNA中的內(nèi)源性小蛋白被表征,絕大多數(shù)的功能相關(guān)性還有待發(fā)現(xiàn)。該研究發(fā)表在《Molecular Cancer》,IF:37.3。
技術(shù)路線(xiàn):
主要研究結(jié)果:
1. Circ-YAP與結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移相關(guān)
為了鑒定在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移中具有翻譯活性的關(guān)鍵circRNA,研究者分析了circRNA微陣列和核糖體新生鏈復(fù)合體結(jié)合RNA測(cè)序數(shù)據(jù)。接下來(lái),檢測(cè)了circ-YAP在新鮮冷凍組織中的表達(dá),結(jié)果顯示,與正常組織相比,circ-YAP在CRC組織中輕度升高,而在肝轉(zhuǎn)移病例中顯著過(guò)表達(dá)(圖1A)。同樣,在高轉(zhuǎn)移潛能的CRC細(xì)胞系中也觀察到高circ-YAP(圖1B)。序列分析顯示,circ-YAP來(lái)源于YAP前體mRNA第2、7外顯子的反剪接,成熟全長(zhǎng)為842 bp(圖1C)。在正常和CRC細(xì)胞中,Circ-YAP對(duì)RNAse R消化均有抗性(圖1D),而其線(xiàn)性異構(gòu)體則無(wú)抗性(圖1E)。此外,Circ-YAP的半衰期超過(guò)24h(圖1E)。qRT-PCR和FISH檢測(cè)結(jié)果顯示,circ-YAP主要定位在細(xì)胞質(zhì)中(圖1F)。為了進(jìn)一步探索circ-YAP的臨床相關(guān)性,研究者收集了石蠟包埋組織,采用ISH檢測(cè)circ-YAP的表達(dá)。與預(yù)期一致,circ-YAP在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移組織中顯著上調(diào)(圖1G,H),曲線(xiàn)下面積(AUC)值為0.8433(圖1I)。更重要的是,高circ-YAP患者的生存時(shí)間比低circ-YAP患者短(圖1J)。綜上所述,這些數(shù)據(jù)表明,circ-YAP是一個(gè)真正的circRNA,可能用作CRC肝轉(zhuǎn)移的一個(gè)有前景的指標(biāo)和預(yù)后標(biāo)志物。
圖1 circ-YAP在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移組織中的鑒定
2. 敲低circ-YAP可減輕結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移負(fù)荷
為了研究circ-YAP的生物學(xué)功能,研究者使用CRISPR/Cas13d技術(shù)沉默circ-YAP。如圖2A所示,設(shè)計(jì)的3種gRNA均能有效敲低circ-YAP,但不影響YAP mRNA的表達(dá)。劃痕實(shí)驗(yàn)和transwell實(shí)驗(yàn)顯示,沉默circ-YAP顯著抑制LoVo細(xì)胞的遷移(圖2B,C)和侵襲(圖2D,E)。接下來(lái),研究者在circ-YAP低表達(dá)的CRC細(xì)胞中過(guò)表達(dá)circ-YAP(圖2F),結(jié)果顯示,circ-YAP過(guò)表達(dá)后細(xì)胞遷移和侵襲能力顯著增強(qiáng)(圖2G,H)。通過(guò)在NOD/SCID小鼠的腸壁內(nèi)注射TC71 PDX細(xì)胞建立自發(fā)性結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移PDX模型(圖2I)。10周后,對(duì)照組50%的小鼠發(fā)生了肝轉(zhuǎn)移,而circ-YAP沉默組只有6.7%的小鼠發(fā)生了肝轉(zhuǎn)移(圖2J,K)。綜上所述,這些數(shù)據(jù)表明circ-YAP在CRC細(xì)胞侵襲性和肝轉(zhuǎn)移中起著至關(guān)重要的作用。
圖2 沉默circ-YAP可減輕結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移負(fù)荷
3. Circ-YAP編碼YAP蛋白異構(gòu)體YAP-220aa
通過(guò)序列比對(duì),研究者發(fā)現(xiàn)circ-YAP包含一個(gè)潛在的跨越ORF連接位點(diǎn),編碼220-aa蛋白(圖3A,B)。為了驗(yàn)證circ-YAP是可翻譯的,研究者在circ-YAP過(guò)表達(dá)載體中添加Flag標(biāo)簽;其中,circ-YAP的連接位點(diǎn)被移動(dòng)到ORF的終止密碼子,Flag序列被一分為二,位于circ-YAP的兩側(cè)(圖3C)。轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞后,flag tag抗體檢測(cè)到約26 kDa的條帶(圖3D)??捡R斯亮藍(lán)染色顯示,過(guò)表達(dá)circ-YAP后,這一條帶更加明顯,隨后,通過(guò)質(zhì)譜分析驗(yàn)證了YAP-220aa的獨(dú)特氨基酸序列(圖3E)。接下來(lái),研究者制備了特異性靶向YAP-220aa的兔多克隆抗體,并證實(shí)其能有效檢測(cè)內(nèi)源性YAP-220aa蛋白(圖3F)。鑒于circRNA的翻譯是由IRES或m6A修飾驅(qū)動(dòng)的,研究者首先評(píng)估了IRES對(duì)circ-YAP的翻譯活性。值得注意的是,在翻譯起始位點(diǎn)的近端發(fā)現(xiàn)了一個(gè)高度保守的m6A位點(diǎn)“GGACA”(圖3B)。腺嘌呤突變?yōu)榘奏ず螅▓D3C),YAP-220aa蛋白幾乎無(wú)法被抗flag抗體檢測(cè)到(圖3D),這意味著m6A對(duì)circ-YAP翻譯至關(guān)重要。YAP-220aa主要定位于細(xì)胞質(zhì)(圖3G),并且在高轉(zhuǎn)移CRC細(xì)胞中過(guò)表達(dá)(圖3H)。同樣,沉默METTL3顯著降低了內(nèi)源性YAP-220aa的表達(dá)(圖3I),并且與低轉(zhuǎn)移的CRC細(xì)胞相比,高轉(zhuǎn)移的CRC細(xì)胞中circ-YAP的m6A富集更多(圖3J)。功能上,過(guò)表達(dá)circ-YAP增強(qiáng)了HT29和SW480細(xì)胞的遷移和侵襲,這些作用被m6A突變阻斷(圖3K,L)。此外,實(shí)驗(yàn)肝轉(zhuǎn)移模型顯示,野生型circ-YAP增加了CRC細(xì)胞在體內(nèi)的肝轉(zhuǎn)移(圖3M),而m6A突變型circ-YAP沒(méi)有增加(圖3M)。綜上所述,這些發(fā)現(xiàn)表明circ-YAP的功能是通過(guò)翻譯成一個(gè)新的YAP蛋白亞型,這是由m6A修飾介導(dǎo)的。
圖3 Circ-YAP編碼由m6A介導(dǎo)的YAP-220aa
4. 翻譯circ-YAP需要m6A閱讀器YTHDF3
研究者想知道哪些m6A閱讀蛋白參與了circ-YAP翻譯過(guò)程。如圖4A所示,敲低YTHDF3,而不是YTHDF1/2,顯著阻斷了由circ-YAP過(guò)表達(dá)引起的YAP-220aa水平升高(圖4A)。為了進(jìn)一步驗(yàn)證YTHDF3對(duì)circ-YAP翻譯的影響,研究者利用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建了YTHDF3敲除的CRC細(xì)胞株。結(jié)果表明,在YTHDF3?/?LoVo和SW620細(xì)胞中無(wú)法檢測(cè)到p-circ-YAP-Flag的翻譯產(chǎn)物(圖4B,C)。相反,YTHDF3過(guò)表達(dá)細(xì)胞中YAP-220aa的表達(dá)顯著增加,但這種作用在刪除活性YTH結(jié)構(gòu)域后消失(圖4D)。RIP和RNA pull-down實(shí)驗(yàn)結(jié)果揭示了circ-YAP和YTHDF3之間的相互作用(圖4E,F)。此外,體外合成circ-YAP并與GST-tag YTHDF3蛋白孵育,結(jié)果顯示circ-YAP直接結(jié)合YTHDF3(圖4G)??紤]到YTHDF3介導(dǎo)的翻譯調(diào)節(jié)需要非經(jīng)典eIF4G2,研究者進(jìn)行了Co-IP實(shí)驗(yàn),并證實(shí)YTHDF3和eIF4G2在SW620和LoVo細(xì)胞中形成內(nèi)源性復(fù)合體(圖4H)。正如預(yù)期,沉默eIF4G2顯著降低了YAP-220aa蛋白水平(圖4I)。RNA pull-down實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,eIF4G2和eIF4A/B被circ-YAP富集,而這些相互作用被YTHDF3敲除消除(圖4J,K),表明circ-YAP通過(guò)YTHDF3招募eIF4G2翻譯起始復(fù)合物。功能上,敲除YTHDF3或沉默eIF4G2后,circ-YAP引起的細(xì)胞侵襲增強(qiáng)被明顯抵消(圖4L,M)。
圖4 YTHDF3招募eIF4G2復(fù)合體來(lái)驅(qū)動(dòng)circ-YAP翻譯
5. YAP-220aa與LATS1相互作用并增加YAP的核轉(zhuǎn)位
通過(guò)分析YAP-220aa蛋白序列,研究者發(fā)現(xiàn)YAP-220aa包含了YAP的WW1/2結(jié)構(gòu)域,這是與LATS1相互作用所必需的,隨后YAP被14-3-3磷酸化并被保留在細(xì)胞質(zhì)中。因此,研究者推測(cè)YAP-220aa可能與LATS1競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合,從而阻斷YAP磷酸化。正如預(yù)期的那樣,在轉(zhuǎn)染p-circ-YAP-Flag載體的HEK293T細(xì)胞中,Flag-tag抗體大量免疫沉淀LATS1,然而,當(dāng)WW1/2結(jié)構(gòu)域被刪除后,上述現(xiàn)象消失(圖5A)。此外,在LoVo和SW620細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)了YAP-220aa和LATS1之間的內(nèi)源性結(jié)合(圖5B,C)。敲低circ-YAP顯著增加了YAP和LATS1, 14-3-3之間的相互作用(圖5D,E)。此外,在circ-YAP沉默的CRC細(xì)胞中,YAP-220aa減少,而YAP磷酸化增加,然而,這些作用被野生型circ-YAP過(guò)表達(dá)消除,但沒(méi)有被m6A突變的circ-YAP過(guò)表達(dá)消除(圖5F,G)。增強(qiáng)circ-YAP的表達(dá)導(dǎo)致更多的YAP從細(xì)胞質(zhì)進(jìn)入細(xì)胞核,m6A突變后這種現(xiàn)象消失(圖5H,I)。在circ-YAP沉默的CRC細(xì)胞中,YAP熒光素酶報(bào)告活性及其下游促轉(zhuǎn)移基因水平顯著降低(圖5J,K)。YAP敲低或使用YAP的藥物抑制劑維替泊芬治療后,circ-YAP誘導(dǎo)的侵襲和肝轉(zhuǎn)移結(jié)節(jié)被顯著消除(圖5L-N)??傊@些數(shù)據(jù)表明,circ-YAP編碼的YAP-220aa通過(guò)與LATS1相互作用激活YAP從而促進(jìn)CRC的侵襲性和肝轉(zhuǎn)移。
圖5 YAP-220aa增加YAP活性
6. YAP/TEAD復(fù)合體反轉(zhuǎn)錄激活circ-YAP
YAP是一種轉(zhuǎn)錄共激活因子,通過(guò)與一些轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合來(lái)調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄。有趣的是,YAP敲低或維替泊芬處理顯著降低了HEK293T和CRC細(xì)胞中的circ-YAP表達(dá)(圖6A)。值得注意的是,新生的circ-YAP也受到YAP和維替泊芬的影響(圖6B),這表明YAP在轉(zhuǎn)錄水平調(diào)節(jié)circ-YAP表達(dá)。越來(lái)越多的證據(jù)表明,一些circRNA具有獨(dú)立于其線(xiàn)性親本的自身啟動(dòng)子。將circYAP的啟動(dòng)子片段插入pGL3-basic載體中,熒光素酶結(jié)果顯示YAP在circ-YAP起始位點(diǎn)上游-974~-374處增加了circ-YAP的轉(zhuǎn)錄活性(圖6C)。通過(guò)JASPAR工具進(jìn)行序列分析,在上述區(qū)域發(fā)現(xiàn)了兩個(gè)TEAD結(jié)合基序(TB1,-886~-877,TAAATACTAT;TB2,-406~-397,CATATTCTTT)(圖6D)。如圖6E、F所示,TB1或TB2的突變顯著降低了circ-YAP的啟動(dòng)子活性,但當(dāng)同時(shí)突變時(shí),YAP-5SA引起的啟動(dòng)子活性增強(qiáng)被完全抵消。此外,YAP-5SA增加了TEAD2沉默細(xì)胞中circ-YAP的表達(dá),但并未增加TEAD1/3/4沉默細(xì)胞中circ-YAP的表達(dá)(圖6G,H),表明TEAD1/3/4負(fù)責(zé)yap介導(dǎo)的circ-YAP調(diào)控。此外,ChIP檢測(cè)的結(jié)果表明,YAP與TB1和TB2結(jié)合(圖6I),同時(shí)募集Pol II和隨后的磷酸化(圖6J,K),這是從起始復(fù)合物釋放Pol II和起始延伸所需的修飾。此外,ChIP-re-ChIP數(shù)據(jù)表明,YAP/TEAD1復(fù)合物在circ-YAP啟動(dòng)子的TB1和TB2處富集(圖6L,M),這也通過(guò)使用生物素標(biāo)記的探針進(jìn)行的DNA下拉實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了驗(yàn)證(圖6N)。以上結(jié)果表明,circ-YAP被YAP轉(zhuǎn)錄激活,從而形成促進(jìn)結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移的正反饋環(huán)路。
圖6 Circ-YAP是YAP激活的轉(zhuǎn)錄
7. circ-YAP/YAP-220aa/YAP調(diào)控軸的臨床驗(yàn)證
最后,研究者檢測(cè)了YAP靶基因在結(jié)直腸癌組織中的表達(dá)。qRT-PCR結(jié)果顯示,circ-YAP表達(dá)與促轉(zhuǎn)移基因CYR61、CTGF、TWIST1和FOXM1呈正相關(guān)(圖7A-D)。此外,免疫染色結(jié)果顯示,92.5%的CRC病例具有相同的circ-YAP和YAP-220aa的表達(dá)趨勢(shì),只有7.5%的病例具有不一致的表達(dá)趨勢(shì)(圖7E,F)。并且高circ-YAP與YAP的核聚集呈強(qiáng)正相關(guān)(圖7E,G)。YAP-220aa在有肝轉(zhuǎn)移的CRC中表達(dá)高于無(wú)肝轉(zhuǎn)移的CRC(圖7H),其AUC值為0.8597(圖7I),提示YAP-220aa可能作為預(yù)測(cè)CRC肝轉(zhuǎn)移的指標(biāo)。重要的是,高circ-YAP和yap-220aa的患者比低circ-YAP和yap-220aa的患者生存時(shí)間更短(圖7J),表明兩者聯(lián)合比單獨(dú)circ-YAP具有更好的預(yù)后價(jià)值。
圖7 circ-YAP/YAP-220aa/YAP調(diào)控軸在臨床樣本中的驗(yàn)證
結(jié)論:
綜上所述,該研究揭示了circRNA編碼的蛋白和Hippo/YAP信號(hào)通路之間迄今未被識(shí)別的偶聯(lián),對(duì)CRC肝轉(zhuǎn)移的治療具有指導(dǎo)意義。
實(shí)驗(yàn)方法:
定量實(shí)時(shí)聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR),熒光原位雜交(FISH),原位雜交(ISH),免疫組織化學(xué)(IHC),細(xì)胞轉(zhuǎn)染,傷口愈合實(shí)驗(yàn),Transwell實(shí)驗(yàn),CCK-8檢測(cè),小鼠結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移模型的建立,蛋白質(zhì)印跡,免疫共沉淀(Co-IP),免疫熒光(IF),RNA免疫沉淀(RIP),甲基化免疫沉淀(meRIP),RNA pull-down檢測(cè),熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè),染色質(zhì)免疫沉淀(ChIP),DNA pull-down檢測(cè)
參考文獻(xiàn):
Zeng K, Peng J, Xing Y, Zhang L, Zeng P, Li W, Zhang W, Pan Z, Zhou C, Lin J. A positive feedback circuit driven by m6A-modified circular RNA facilitates colorectal cancer liver metastasis. Mol Cancer. 2023 Dec 13;22(1):202. doi: 10.1186/s12943-023-01848-1.